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该研究由Trang Thi Le、Hong Il Choi、Ji Won Kim等共同完成,主要作者来自韩国生物科学与生物技术研究院(Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology)以及韩国科学技术院(University of Science and Technology)。研究于2025年3月3日发表在《PNAS》(Proceedings of the National Academy of Sciences)期刊上。
该研究属于应用生物科学领域,主要关注微藻基因编辑技术的改进。微藻作为一种碳中性底盘(carbon-neutral chassis),在生物燃料和生物制品生产中有广泛应用前景。然而,当前基于CRISPR/Cas9系统的基因编辑技术在微藻中的应用受到限制,主要原因是Cas9蛋白的核导入效率低,导致基因编辑频率较低。因此,研究团队旨在通过优化Cas9蛋白的核定位信号(Nuclear Localization Signal, NLS),提高其在微藻中的基因编辑效率。
研究分为以下几个主要步骤:
核定位信号的选择与优化
研究团队从植物病原菌Agrobacterium tumefaciens中提取了两种NLS(VirD2和VirE2),并将其与Cas9蛋白融合。通过计算NLS的累积电荷和结构特征,评估其与微藻核输入蛋白(Importin α, Impα)的亲和力。研究还利用AlphaFold和HDock等计算机模拟工具,预测了NLS与Impα的结合模式。
Impα蛋白的鉴定
在Chlamydomonas reinhardtii(一种模式微藻)中,研究团队通过计算机模拟和实验验证,确定了负责核输入的Impα蛋白(Cripa1),并分析了其与NLS的结合机制。
细胞通透性优化
为了提高Cas9蛋白的细胞内导入效率,研究团队优化了细胞壁和细胞膜的通透性。通过比较不同试剂(如Gametolysin和Triton X-100)的效果,最终选择Gametolysin预处理结合电穿孔的方法,显著提高了Cas9蛋白的细胞内导入效率。
NLS与Impα结合亲和力的实验验证
研究团队通过共免疫沉淀(Co-IP)、酶联免疫吸附试验(ELISA)和微尺度热泳(Microscale Thermophoresis, MST)等方法,定量分析了不同NLS与Impα的结合亲和力。结果显示,VirD2 NLS与Impα的结合亲和力最高,显著优于常用的SV40Tag NLS。
基因编辑效率的体内验证
在Chlamydomonas reinhardtii和工业微藻Chlorella sp. HS2中,研究团队分别应用了不同NLS融合的Cas9蛋白进行基因编辑。通过菌落计数、短读长深度测序(SR Deep Seq.)和Sanger测序,评估了基因编辑频率和突变效率。结果显示,VirD2 NLS显著提高了基因编辑频率,在两种微藻中均表现出较高的编辑效率。
跨物种适用性验证
研究团队进一步在Chlorella sp. HS2中验证了VirD2 NLS的跨物种适用性。通过AlphaFold预测了Chlorella sp. HS2中的Impα蛋白结构,并进行了基因编辑实验,结果证实了VirD2 NLS在工业微藻中的高效性。
NLS与Impα的结合亲和力
VirD2 NLS与Impα的结合亲和力最高,其解离常数(Kd)为4.785 nM,显著优于VirE2 NLS(7.811 nM)和SV40Tag NLS(8.728 nM)。
基因编辑频率的提高
在Chlamydomonas reinhardtii中,VirD2 NLS融合的Cas9蛋白将基因编辑频率提高了2.4倍,显著高于SV40Tag NLS。在Chlorella sp. HS2中,VirD2 NLS同样表现出较高的编辑效率,编辑频率为3.60 × 10⁻⁴,显著高于其他NLS。
突变类型分析
通过Sanger测序,研究团队发现,基因编辑主要产生缺失(Deletion)和插入(Insertion)突变,其中-3 bp和-6 bp的缺失突变最为常见。
该研究通过优化Cas9蛋白的核定位信号,显著提高了微藻基因编辑的效率。VirD2 NLS的引入不仅解决了Cas9蛋白核导入效率低的问题,还展示了其在多种微藻中的跨物种适用性。这一成果为微藻基因工程提供了新的工具,有望推动微藻在生物燃料、生物制品等领域的应用。
高效核定位信号的设计
研究团队首次将植物病原菌的NLS应用于微藻基因编辑,显著提高了Cas9蛋白的核导入效率。
跨物种适用性
研究验证了VirD2 NLS在模式微藻和工业微藻中的高效性,展示了其广泛的应用前景。
多方法验证
研究结合了计算机模拟、体外实验和体内验证,全面评估了NLS的效果,确保了结果的可靠性。
研究团队还开发了一种基于Gametolysin和电穿孔的细胞通透性优化方法,显著提高了Cas9蛋白的细胞内导入效率。此外,研究还提供了详细的实验流程和数据分析方法,为后续研究提供了参考。
该研究通过优化核定位信号,解决了微藻基因编辑中的关键问题,为微藻基因工程的发展提供了重要支持。