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研究作者与机构
本研究的主要作者包括Dylan Dodd、Matthew H. Spitzer、William Van Treuren、Bryan D. Merrill、Andrew J. Hryckowian、Steven K. Higginbottom、Anthony Le、Tina M. Cowan、Garry P. Nolan、Michael A. Fischbach和Justin L. Sonnenburg。研究团队来自斯坦福大学医学院的病理学系、微生物学与免疫学系,以及加州大学旧金山分校的生物工程与治疗科学系。研究发表于2017年11月的《Nature》期刊。
学术背景
本研究的科学领域为肠道微生物组与宿主代谢的相互作用。肠道微生物组通过代谢芳香族氨基酸(aromatic amino acids, AAAs)产生多种代谢物,这些代谢物进入宿主的血液循环并可能对宿主的生理和免疫系统产生系统性影响。尽管这些代谢物的浓度与药物剂量相当,但其产生的微生物代谢途径仍知之甚少。本研究旨在揭示肠道共生菌Clostridium sporogenes代谢芳香族氨基酸的途径,并探讨这些代谢物对宿主肠道通透性和系统免疫的影响。研究的目标是通过遗传学与代谢组学相结合的方法,表征C. sporogenes的代谢途径,并探索如何通过工程化肠道微生物组来调控宿主的代谢输出。
研究流程
研究包括以下几个主要步骤:
1. 基因突变体的构建与验证
研究团队通过插入Clostron盒(Clostron cassette)选择性破坏C. sporogenes中与代谢途径相关的基因(如fldc、pora、fldh、acda等),构建了多个突变体。通过PCR验证突变体的基因插入位点,并检测突变体的生长特性。
2. 代谢物分析与途径表征
使用液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)技术分析野生型和突变体C. sporogenes在特定培养基中的代谢物积累情况。通过比较不同突变体的代谢物谱,确定各基因在代谢途径中的作用。
3. 无菌小鼠的肠道定植实验
将野生型和fldc突变体C. sporogenes分别定植于无菌小鼠的肠道中,持续4周。通过LC-MS/MS检测小鼠血清中的代谢物水平,评估突变对宿主代谢的影响。
4. 宿主免疫与肠道通透性分析
使用质谱流式细胞术(mass cytometry)分析小鼠外周血中的免疫细胞亚群,评估代谢物变化对宿主免疫系统的影响。同时,通过FITC-葡聚糖(FITC-dextran)实验检测小鼠肠道通透性的变化。
5. 复杂微生物群落中的验证
在包含多种非IPA(indolepropionic acid)产生菌的复杂微生物群落中,验证fldc突变对IPA水平的影响,并进一步评估其对肠道通透性的作用。
主要结果
1. 基因突变对代谢途径的影响
研究发现,fldc、fldh和acda基因的突变显著抑制了C. sporogenes对芳香族氨基酸的还原代谢,导致IPA、PPA(phenylpropionic acid)和4-OH-PPA(4-hydroxyphenylpropionic acid)的积累显著减少。
2. 无菌小鼠中的代谢物变化
在定植fldc突变体的小鼠中,血清IPA水平显著降低,而上游代谢物水平显著升高。这表明fldc在IPA的生成中起关键作用。
3. 宿主免疫与肠道通透性的变化
fldc突变体定植的小鼠表现出循环髓系细胞(如中性粒细胞和经典单核细胞)和抗原经验性T细胞(包括CD4+和CD8+ T细胞)的频率显著增加。此外,fldc突变体定植的小鼠肠道通透性显著增加,表明IPA在维持肠道屏障功能中起重要作用。
4. 复杂微生物群落中的验证
在复杂微生物群落中,fldc突变体定植的小鼠血清和盲肠内容物中的IPA水平显著降低,且肠道通透性显著增加,进一步验证了IPA对肠道屏障功能的关键作用。
结论
本研究揭示了C. sporogenes代谢芳香族氨基酸的途径,并证明通过遗传工程可以调控宿主血清中的代谢物水平,从而影响宿主的生理功能。研究发现IPA在维持肠道屏障功能和调节宿主免疫系统中起重要作用。这些结果为未来通过工程化肠道微生物组来优化宿主健康提供了概念验证。
研究亮点
1. 重要发现
本研究首次揭示了C. sporogenes代谢芳香族氨基酸的完整途径,并证明IPA在维持肠道屏障功能和调节宿主免疫中的关键作用。
2. 方法创新
研究团队开发了基于Clostron系统的基因突变技术,并结合LC-MS/MS和质谱流式细胞术等先进技术,全面分析了代谢物对宿主的影响。
3. 研究对象的特殊性
研究聚焦于C. sporogenes这一肠道共生菌,并通过无菌小鼠模型和复杂微生物群落实验,验证了研究结果的普适性。
其他有价值的内容
本研究还发现,除了C. sporogenes外,Peptostreptococcus anaerobius和Clostridium cadaveris等菌株也具备生成IPA的能力,这表明IPA的生成在肠道微生物中可能比之前认为的更普遍。此外,研究团队通过生物信息学分析,鉴定了与phenyllactate dehydratase基因簇同源的基因簇,为未来研究提供了重要线索。
这篇报告详细介绍了研究的背景、方法、结果和意义,为其他研究者提供了全面的参考。